تعداد نشریات | 23 |
تعداد شمارهها | 368 |
تعداد مقالات | 2,890 |
تعداد مشاهده مقاله | 2,566,168 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 1,821,829 |
اصلاح از طریق جهش در برنج با استفاده از اشعه گاما و کشت جنین بالغ و نابالغ | ||
بیوتکنولوژی و بیوشیمی غلات | ||
مقاله 2، دوره 2، شماره 1، فروردین 1402، صفحه 22-41 اصل مقاله (536.44 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22126/cbb.2023.9030.1043 | ||
نویسندگان | ||
داود کاظمی* ؛ مسعود رحیمی | ||
پژوهشکده تحقیقات کشاورزی هستهای، کرج، ایران | ||
چکیده | ||
مقدمه: از معایب استفاده از بذر جهت ایجاد جهش ژنتیکی میتوان به افزایش مدت زمان تحقیق، لزوم کشت کشت گیاه جهت اندازه گیری صفات وو وجود شیمر در گیاهان موتانت اشاره نمود. برای حل این مشکلات امروزه از فنون بیوتکنولوژی مخصوصاً کشت بافت استفاده میشود. در این روش برای ایجاد جهش در گیاه برنج نیاز به سیستم باززایی تکرار پذیر و کارا است تا بتوان از بافتهای تغییر یافته، گیاهان بارور به دست آورد. مواد و روشها: جهت تعیین دز مناسب القاء جهش برای ایجاد تغییرات ژنتیکی در بافت کالوس حاصل از جنین بالغ و نابالغ واریتههای نعمت و طارم محلی، آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با استفاده از دزهای 20 ، 30، 40، 50 و 60 گری (GY) پرتو گاما به همراه شاهد در چهار تکرار اجرا گردید. جهت کالوسزایی، محیط کشت MS با 5/0 میلیگرم در لیتر توفوردی و 1 میلیگرم در لیتر کازئین، برای هر دو رقم مناسب تشخیص داده شد. همچنین برای باززایی کالوسهای حاصل از هر دو نوع جنین رقم طارم، محیط پایه MS حاوی 4 میلیگرم در لیتر BAP و 5/0 میلیگرم در لیتر IAA و 5/0 میلیگرم در لیتر NAA و 5 میلیگرم در لیتر کازئین و برای رقم نعمت در هر دو نوع ماده گیاهی محیط کشت MS تکمیل شده با 2 میلیگرم در لیتر BAP ، 2 میلیگرم در لیتر KIN و 1 میلیگرم در لیتر IAA استفاده شد. در مرحله نهایی کالوسهای 30 روزه پرتودهی شده به همراه تیمار شاهد در مرحله باززایی با یکدیگر از نظر صفاتی همچون درصد رطوبت، سرعت رشد و درصد باززایی مقایسه شدند. یافتهها: پس از پرتوتابی، اثر رقم بر درصد باززایی، سرعت رشد بر اساس وزن و سرعت رشد قطر کالوس و اثر نوع جنین بر درصد باززایی و درصد رطوبت، اثر پرتو برای تمام صفات مورد بررسی، اثر متقابل رقم×جنین نیز فقط برای درصد باززایی و درصد رطوبت، اثر متقابل رقم×پرتو برای تمام صفات و اثر متقابل جنین×پرتو و رقم×جنین×پرتو فقط برای درصد باززایی معنی دار شد. متوسط دز کشنده (LD50) بدست آمده در رقم نعمت و طارم با جنین بالغ به ترتیب مربوط به دزهای 78/26 و 83/41 گری و با جنین نابالغ به ترتیب 55/14 و 30/35 گری بود. نتیجهگیری: اختلاف حاصل در این آزمایش نه تنها میتواند ناشی از تفاوت های ژنتیکی باشد بلکه می تواند به دلیل تفاوت در میزان رطوبت کالوس و تأثیر پرتو گاما باشد. | ||
کلیدواژهها | ||
برنج؛ موتاسیون؛ کشت جنین؛ پرتو گاما | ||
مراجع | ||
Bagheri, L., Amiri-Khah, R., Noori, M., & Mozafari, K. 2017. Effect of gamma irradiation on growth and determine optimum dose in order to induce genetic variation in landrace rice (Oryza sativa L.) cultivars. Journal of Crop Breeding, 9(21), 130-138. [In Persian]. Farsi, M., & Bagheri, A. 2004. Principles of Plant Breeding. Jdm Press. [In Persian]. Bagheri, L., Mosleh, E., & Fatolahi, H. 2008. Using gamma rays to induce mutations in the somatic callus of rice (Oryza sativa). The Second National Congress on Nuclear Technology Application in Agricultural and Natural Resource Sciences. Karaj, Iran. [In Persian]. Ahloowalia, B. S. 1997. In vitro radiation induced mutagenesis in potato. In: The impact of biotechnology in agriculture. Sangwan RS, Sangwan Noreel BS (Eds). Klumer Academic publisher, Dordrecht, Netherlands, 39-46. 10.1007/978-94-009-0587-0_4 Anonymous. 1995. Induced mutations and molecular techniques for crop improvement. Proc. FAO.IAEA symposium, Vienna 1995. IAEA, Vienna. Arulbalachandran, D., Mullainathan, L., Karthigayan, S., Somasundaram, S. T., & Velu, S. 2010. Genetic variation in mutants of black gram (Vigna mungo (L.) Hepper) evaluated by RAPD Markers. Journal of Crop Sciences and Biotechnology, (1), 1-6. Asencion, A. B. 1977. Mutation breeding manual. Proc. FAO.IAEA symposium, Vienna 1985. IAEA. 9201150776 Babaei, A. R. 2010. Radio sensivity studies of morpho-physiological characteristics in some Iranian rice varieties (Oryza sativa L.), In M1 generation. African Journal of Agricultural Research, 5, 2124- 2130. 10.5897/AJAR10.234 Basri, M. 2005. Nuclear techniques used in agricultural research in turkey. Ankara nuclear agriculture and animal sciences research center. https://inis.iaea.org/search/search.aspxorig_q=RN:31000907 Bregitzer, P. 1992. Plant regeneration and callus type in barley: Effects of genotype and culture medium. Crop Science, 32, 1108-1112. https://doi.org/10.2135/cropsci1992.0011183X003200050007x Bronzema, E. B. F., Redig, P., Oostveen, W. J. F., Onckelen, H. A., & Lammeren, A. A. M. 1996. Uptake and biochemical analysis of 2,4-D in cultured zygotic embryos of Zea mays L. Plant Physiology, 149, 363-371. 10.1016/s0176-1617(96)80135-0 Da Luz, V. K., de Oliveira, V. F., Maltzahn, L. E., & Venske, E. 2020. Mutation Breeding for Rice Grain Quality: Aspects, Considerations, and Promising Results. In: Costa de Oliveira, A., Pegoraro, C., Ebeling Viana, V. (eds) The Future of Rice Demand: Quality Beyond Productivity. Springer, 1-10. https://doi.org/10.1007/978-3-030-37510-2_15 Gasol, S. S., Das, A., Gopal, J., Minocha, J. L., Chopra, H. R., & Dhaliwal, H. S. 2001. In vitro induction of variability through radiation for late blight resistance and heat tolerance in potato. Plant breeding and genetics section. joint FAO.IAEA division international atomic energy agency wagramer strasse 5 P.O. Box 100 A-1400 Vienna, Austria, 1-8. https://www.osti.gov/etdeweb/biblio/20181058 Gholami, A. A., & Tarinejad, A. 2018. Callus induction and regeneration of bread wheat cultivars from Different explants, Journal of Cell & Tissue, 9(1), 37-56. Hagio, T., Ichiri, S. S., & Yamada, T. 2002. Efficient plant regeneration through morphogenesis in Japanese commercial variety of wheat, In Vitro Cell Development of Biology, 38, 1394-1396. Lapade, A. G., Veluz, A. M. S., Marbella, L. J., Barrida, A. C., & Rama, M. G. 2002. Mutation breeding in vegetatively propagated crops in the Philippines. Philippine nuclear research institute. Commonwealth avenue, Diliman, Quezon City. 1- 10. https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-94-017-0956-9_6 Leifert, C., Pryca, S., Lumsden, P. J., & Waites, W. M. 1992. Effect of medium acidity on growth and rooting of different plant species growing in vitro. Plant Cell Tissue Culture, 30, 171- 179. https://link.springer.com/article/10.1007/BF00040019 Micke, A., Donini, B., & Maluszynski, M. 1991. Induced mutations for crop improvement. Gamma field symposia No.30. Inst. of radiation breeding, NIAR, MAFF, Japan, 1- 21. Corpus ID: 89223076 Monirul Islam. M., Mahatalat A., & Debabrata, M. 2005. In Vitro Callus Induction and Plant Regeneration in Seed Explants of Rice (Oryza Sativa L.). Research Journal of Agriculture and Biological Sciences, 1(1), 72- 75. https://www.researchgate.net/publication/266456925
Novak, F. J. 1991. Plant tissue culture techniques for mutation breeding. Joint FAO. IAEA programme IAEA laboratories-seibersdorf, Austria Plant Breeding, 127- 132. https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-3-319-90698-0_6 Omiya, H., & Ken, I. 2004. Improvement of crop productivity and mutation. Institute of radiation breeding NIAS Gamma field symposia number, 43 ISSN 0435-1096. https://openlibrary.org/books/OL17725516M/Improvement_of_crop_productivity_and_mutation Pandey, S. K., Ramesh, B., & Gupta, P. K. S. 1994. study on effect on genotype and culture medium on callus formation and plant regeneration in rice (Oryza sativa L.). Indian Journal of Genetic, 54 (3), 293- 299. Rashed, M., Abou Deif, M., Abdel Hady, A., & Fahmy, K. H. 2000. Effect of gamma irradiation on maize embryo culture regenerated plants. 8th. Conf. Agric. Dev. Res. Fac. Agric. Ain Shams Univ. Annal. Agriculture Science, 2, 765, 0570- 1783. https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/20043097457 Snustad, D. P., & Simmons, M. J. 2015. Principles of genetics. 130-138. https://books.google.com/books/about/Principles_of_Genetics.html?id=NBB0CgAAQBAJ Soeranto, H., Sobrizal, I., & Manurung, S. 2002. Biotechnological approach in crop improvement by mutation breeding in Indonesia. Proceeding of the workshop on plant mutation breeding. 20-24 August 2001, Bangkok, Thailand, 56- 67. https://www.osti.gov/etdeweb/biblio/20300524 Stadler, L. J. 1930. Some genetic effects of X-rays in plants. Heredity, 21, 3-19. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.jhered.a103249 Sukekiyo, Y., & Kimura, Y. 1991. Somaclonal variation in protoplast-derived rice plants. Gamma Field Symposia No.30. Inst. of radiation breeding, NIAR, MAFF, Japan, 43- 58. Yan, L., Li, X., & Wu, D. 2010. The comparison in tissue culture ability of mature embryo in different cultivars of rice, Agricultural Sciences in China, 840-846. Yu, G., Wang, J., Miao, L., Xi, M., Wang, Q., & Wang, K. 2019. Optimization of mature embryo-based tissue culture and Agrobacterium-mediated transformation in model grass Brachypodium distachyon, Internationl Journal of Molecular Science, 20(21), 5448. Zhen, H. R. 2001. In vitro technique for selection of radiation induced mutants. Plant breeding and genetics section joint FAO.IAEA division international atomic energy agency wagramer strasse 5 P.O. Box 100 A-1400 Vienna, Austria. IAEA-TECDOC-1227. XA0101549-ISVJ | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 278 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 241 |