| تعداد نشریات | 21 |
| تعداد شمارهها | 457 |
| تعداد مقالات | 3,578 |
| تعداد مشاهده مقاله | 4,385,105 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 2,889,805 |
مطالعه الگوی بیان ژن bZIP transcription factor 1 و فعالیت برخی آنزیمهای آنتی-اکسیدانت و تجمع پرولین در ذرت (Zea mays L.) تحت تنش شوری | ||
| بیوتکنولوژی و بیوشیمی غلات | ||
| مقاله 1، دوره 4، شماره 4، دی 1404، صفحه 444-472 اصل مقاله (853.25 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22126/cbb.2026.13714.1136 | ||
| نویسندگان | ||
| مرجان جنتدوست؛ رضا درویش زاده* | ||
| گروه تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه، اومیه، ایران. | ||
| چکیده | ||
| مقدمه: ذرت (Zea mays L.)، گیاهی دیپلوئید از خانواده گندمیان بوده و از لحاظ فتوسنتز جزو گیاهان C4 میباشد. تنش شوری سبب افزایش تولید گونههای فعال اکسیژن (ROS) میشود که این خود باعث ایجاد تنش ثانویه به نام تنش اکسیداتیو در گیاهان میشود. افزایش سطح ROS بهویژه موجب پراکسیداسیون اسیدهای چرب غیراشباع شده و در نتیجه، فرآوردههای ثانویهای مانند کتونها، مالوندیآلدئید و سایر ترکیبات مشتق از آنها تولید میشود. پراکسیداسیون لیپیدها و تولید مالوندیآلدئید بهعنوان یکی از شاخصهای مهم آسیب اکسیداتیو، بهطور گسترده برای ارزیابی میزان حساسیت یا تحمل ژنوتیپهای گیاهی به تنش شوری مورد استفاده قرار میگیرد. گیاهان برای مقابله با تنش اکسیداتیو ناشی از شوری، مجموعهای از سازوکارهای دفاعی آنزیمی و غیرآنزیمی را فعال میکنند. آنزیمهای آنتیاکسیدانت نقش اساسی در سمزدایی ROS و حفظ هموستاز اکسیداتیو ایفا میکنند. علاوه بر این، در تنش شوری، افزایش سنتز پرولین بهعنوان یک اسمولیت فعال موجب حفظ تعادل اسمزی و محافظت سلولها در برابر کمآبی میشود. خانوادهی bZIP یکی از گستردهترین گروههای عوامل رونویسی در گیاهان محسوب میشود که نقشی محوری در پاسخ به تنشهای زیستی و غیرزیستی ایفا میکند. این پژوهش با هدف شناخت پاسخهای فیزیولوژیکی، بیوشیمیایی و مولکولی ذرت به تنش شوری، با تمرکز بر فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانت، تجمع پرولین، پراکسیداسیون لیپیدی و الگوی بیان ژن bZIP transcription factor1 در دو لاین متحمل و حساس تحت تنش شوری ۸ دسیزیمنس بر متر انجام شد. مواد و روشها: دو لاین ذرت شامل لاین متحمل (R10; P14L2) و حساس (S46; MO17) به شوری بر اساس نتایج مطالعات پیشین انتخاب شدند (Ebrahimipour et al., 2020). آزمایش بهصورت فاکتوریل در قالب طرح پایه کاملاً تصادفی با سه تکرار اجرا گردید. فاکتور اول شامل دو ژنوتیپ ذرت و فاکتور دوم شامل دو سطح شوری (شاهد و 8 دسیزیمنس بر متر) بود. گیاهان در اتاق رشد کنترلشده دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه تحت شرایط دمایی 2±25 درجه سانتیگراد، رطوبت نسبی 65–60 درصد و دوره نوری 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی پرورش یافتند. آبیاری گیاهان از مرحله دو برگی با محلول غذایی هوگلند انجام شد. اعمال تنش شوری از مرحله هشتبرگی بهمدت 20 روز با استفاده از محلول غذایی حاوی NaCl، 8 دسیزیمنس بر متر، انجام گرفت. پس از پایان دوره تنش، نمونهبرداری از برگهای جوان بهمنظور انجام آزمایشهای بیوشیمیایی و مولکولی انجام و نمونهها بلافاصله در دمای 80- درجه سانتیگراد نگهداری شدند. برای بررسی الگوی بیان ژن bZIP transcription factor 1، آغازگرهای اختصاصی ژن هدف و ژن مرجع (اکتین) بر اساس توالیهای موجود در پایگاه داده NCBI طراحی شدند. یافتهها: نتایج نشان داد که تنش شوری موجب افزایش معنیدار پراکسیداسیون لیپیدها (مالوندیآلدئید) و تجمع پرولین در هر دو لاین شد، بهطوری که شدت این افزایش در لاین متحمل بیشتر بود. فعالیت آنزیمهای سوپراکسید دیسموتاز و آسکوربات پراکسیداز و کاتالاز تحت تنش شوری افزایش یافت، در حالی که فعالیت گایاکول پراکسیداز کاهش نشان داد. کاتالاز و آسکوربات نیز پاسخ وابسته به ژنوتیپ از خود بروز دادند و فعالیت آنها در لاین حساس نسبت به لاین متحمل افزایش بیشتری داشت. تحلیل همبستگی صفات، ارتباط مثبت و معنیدار بین پرولین، مالوندیآلدئید و فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانت کلیدی را تأیید کرد. در سطح مولکولی، بیان ژن bZIP transcription factor1 بهطور معنیداری تحت تأثیر زمان، لاین و اثر متقابل آنها قرار گرفت؛ بهطوری که لاین حساس افزایش بیان زودهنگام و گذرا و لاین متحمل افزایش بیان تأخیری اما پایدار این ژن را نشان داد. نتیجهگیری: در مجموع، نتایج این پژوهش نشان میدهد که تحمل شوری در ذرت حاصل تعامل هماهنگ میان تنظیم سیستم آنتیاکسیدانت، تجمع اسمولیتها و کنترل زمانی بیان ژنهای تنظیمکننده پاسخ به تنش است و ژنbZIP transcription factor1 میتواند بهعنوان یک نشانگر مولکولی کلیدی در بهبود تحمل شوری مورد توجه قرار گیرد. | ||
| کلیدواژهها | ||
| آنزیمهای آنتیاکسیدانت؛ بیان ژن؛ پرولین؛ تنش غیرزنده؛ ذرت و Real-time PCR | ||
| مراجع | ||
|
Abdelaziz, M.N., Xuan, T.D., Mekawy, A.M.M., Wang H. & Khanh, T.D. 2018. Relationship of salinity tolerance to Na+ Exclusion, proline accumulation, and antioxidant enzyme activity in rice seedlings. Agriculture, 8, 166. Doi:10.3390/agriculture8110166. Abdelgawad, H., Zinta, G., Hegab, M.M., Pandey, R., Asard, H. & Abuelsoud, W. 2016. High Salinity Induces Different Oxidative Stress and Antioxidant Responses in Maize Seedlings Organs. Frontiers of Plant Science, 7, 276. Doi: 10.3389/fpls.2016.00276. Aebi, H. 1984. Catalase in vitro. Methods in Enzymology, 105,121-126. Doi: 10.1016/s0076-6879(84)05016-3 Ashraf, M.A., Ashraf, M. & Ali, Q. 2010. Response of two genetically diverse wheat cultivars to salt stress at different growth stages: Leaf lipid peroxidation and phenolic contents. Pakistan Journal of Botany, 42, 559–566. Aliyari Rad, S., Bandehagh, A., Dezhsetan, S., Behnamian, M. & Moharramnejad S. 2019. Leaf proteome analysis of maize hybrid SC704 under salinity stress. Genetic Engineering and Biosafety Journal, 8 (1), 39- 50. Azooz, M.M., Ismail, A.M. & Abou Elhamd M.F. 2009. Growth, Lipid Peroxidation and Antioxidant Enzyme Activities as a Selection Criterion for the Salt Tolerance of Maize Cultivars. International Journal of Agriculture and Biology, 11(1), 21. Auobi, A., & Rahmani F. 2017. The Effects of Drought and Salt Stresses on the Antioxidant System and pips Gene Expression in (Zea mays L.). Jordan Journal of Agricultural Sciences, 13(4), 997-1013. Https://archives.ju.edu.jo/index.php/jjas/article/view/12873 Bates, L.S., Waldren, R.P., & Teare, I.D. 1973. Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207. Https://doi.org/10.1007/BF00018060 Berwal, M. K. & Ram, C. 2018. Superoxide Dismutase: A Stable Biochemical Marker for Abiotic Stress Tolerance in Higher Plants. In book: Superoxide Dismutase (pp.10), Publisher: Intech Open. DOI: 10.5772/intechopen.82079 Bhusan, H., Das, D. K., Hossain, M., Murata, Y., & Hoque, Md. A. 2016. Improvement of salt tolerance in rice (Oryza sativa L.) By increasing antioxidant defense systems using exogenous application of proline. Australian Journal of Crop Science (AJCS), 10(1)* 50- 56. Doi.org/10.21474/IJAR01/18738 Cai, Z., K. Feng K., Li, X., Yan, H., Zhang, Z. & Liu, X. 2019. Pre‑breeding: the role of antioxidant enzymes on maize in salt stress tolerance. Acta Physiologiae Plantarum, 41,102. Https://doi.org/10.1007/s11738-019-2880-3. Cao, L., Lu, X., Zhang, P., Wang, G., Wei, L., & Wang, T. 2019. Systematic Analysis of Differentially Expressed Maize zmbzip Genes between Drought and Rewatering Transcriptome Reveals bzip Family Members Involved in Abiotic Stress Responses. International Journal of Molecular Scienences, 20, 4103. Doi:10.3390/ijms20174103 Carrasco-Ríos, L. & Pinto, M. 2014. Effect of salt stress on antioxidant enzymes and lipid peroxidation in leaves in two contrasting corn, ‘Lluteño’ and ‘Jubilee’. Chilean Journal of Agricultural Research, 74 (1). Http://dx.doi.org/10.4067/S0718-58392014000100014. Chawla, S., Jain, S., & Jain, V. 2013. Salinity induced oxidative stress and antioxidant system in salt-tolerant and salt-sensitive cultivars of rice (Oryza sativa L.). J. Plant Biochem. Biotechnol, 22, 27–34. Doi: 10.1007/s00709-011-0365-3. Celik, O., Cakır, B. C., & Atak, C. 2019. Identification of the antioxidant defense genes which may provide enhanced salt tolerance in Oryza sativa L. Physiol. Mol. Biol. Plants, 25 (1), 85–99. Https://doi.org/10.1007/s12298-018-0618-0. De Azevedo Neto, A. D., Prisco, J. T., Enéas-Filho, J., de Abreu, C. E. B., & Gomes-Filho, E. 2006. Effect of salt stress on antioxidative enzymes and lipid peroxidation in leaves and roots of salt-tolerant and salt-sensitive maize genotypes. Environmental and Experimental Botany, 56 (1), 87-94. Https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2005.01.008 Dhindsa, R.S., Plump-Dhindsa, P., & Thorpe, T.A. 1981. Leaf senescence: correlated with increased levels of membrane permeability and lipid peroxidation, and decreased levels of superoxide dismutase and catalase. J. Expt. Bot., 32, 93–101. Doi.org/10.1093/jxb/32.1.93 Dröge-Laser, W., Snoek, B.L., Snel, B. & Weiste, C. 2018. The Arabidopsis bzip transcription factor family — an update. Curr Opin Plant Biol., 45, 36–49. Doi: 10.1016/j.pbi.2018.05.001. Ebrahimipour, Z., Darvishzadeh, R., & Arzhang, S. 2020. Study the expression of SOS1, P5CS1 and PMP3-6 genes in maize under salt stress. Crop Biotechnology, 9(4), 1-14 DOI: 10.30473/CB.2020.52969.1807. Fao, 2024. Cereal supply and demand brief (july 2024). Rome. Available at: https://www.fao.org/worldfoodsituation/csdb/en/ Farooq, M., Hussain, M., Wakeel, A., & Siddique K.H.M. 2015. Salt stress in maize: effects, resistance mechanisms, and management. A review. Agronomy for Sustainable Development, 35, 461–481. Https://doi.org/10.1007/s13593-015-0287-0 Filippou, P., Bouchagier, P., Skotti, E. & Fotopoulos V. 2014. Proline and reactive oxygen/nitrogen species metabolism is involved in the tolerant response of the invasive plant species Ailanthus altissima to drought and salinity. Environmental and Experimental Botany, 97, 1-10. Https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2013.09.010 Gharsallah, C., Fakhfakh, H., Grubb, D., & Gorsane, F. 2016. Effect of salt stress on ion concentration, proline content, antioxidant enzyme activities and gene expression in tomato cultivars. Aob PLANTS8: plw055. Doi:10.1093/aobpla/plw055. Gondim, F. A., Gomes-Filho, E., Costa, J. H., Alencar, N.L. M. & Prisco J. T. 2012. Catalase plays a key role in salt stress acclimation induced by hydrogen peroxide pretreatment in maize. Plant Physiology and Biochemistry, 56, 62-71. Doi: 10.1016/j.plaphy.2012.04.012. Gupta, B. & Huang, B. 2014. Mechanism of Salinity Tolerance in Plants: Physiological,Biochemical, and Molecular Characterization. International Journal of Genomics. Article ID 701596, 18 Pages. Http://dx.doi.org/10.1155/2014/701596. He, L., Wu, Z., Wang, X., Zhao, C., Cheng, D., Du, C., Wang, H., Gao, Y., Zhang, R., Han, J., & Xu, J. 2024. A novel maize F-bzip member, zmbzip76, functions as a positive regulator in ABA-mediated abiotic stress tolerance by binding to ACGT-containing elements. Plant Science, 341, 111952. Doi: 10.1016/j.plantsci.2023.111952. Heidari, P. And Najafi Zarrin, H. 2016. Classification and Gene Expression Analysis of bzip Family in Tomato Root under Sub-Optimal Temperature. Journal of Crop Breeding, 8 (17), 17-23. Doi:10.18869/acadpub.jcb.8.17.23. Hussain, I., Arsalan Ashraf, M., Anwar, F., Rasheed, R., Niaz, M., & Wahid, A. 2013. Biochemical characterization of maize (Zea mays L.) For salt tolerance. Plant Biosystems, 1016- 1026. DOI: 10.1080/11263504.2013.798369. Jahantigh, O., najafi, F., Naghdi badi H., Khavari-Nejad, R. A., & Sanjarian, F. 2016. Changes in antioxidant enzymes activites and proline, total phenol and anthocyanine contents in Hyssopus Officinalis L. Plants under salt stress. Acta Biologica Hungarica, 67(2), 195–204. DOI: 10.1556/018.67.2016.2.7. Jannatdoust, M, Darvishzadeh, R., Tahmasebi Enferadi, S., & Monazzah, M. 2021. Study and comparison of leaf proteome in maize (Zea mays L.) Under salt stress. Crop Biotechnology, 10(4), 1-26. DOI: 10.30473/cb.2021.59885.1846. Kaur, G., & Asthir, B. 2019. Water and Salt Stress Metabolomics for Wheat Genotypes of India. Cereal Research Communications, 47 (4), 615–625. DOI: 10.1556/0806.47.2019.36. Kibria, M. G., Hossain, M., Murata, Y., & Hoque, Md. A. 2017. Antioxidant Defense Mechanisms of Salinity Tolerance in Rice Genotypes. Rice Science, 24 (3), 155- 162. Http://dx.doi.org/10.1016/j.rsci.2017.05.001. Levent Tuna, A., Kaya, C., Altunlu H., & Ashraf, M. 2013. Mitigation effects of non-enzymatic antioxidants in maize (Zea mays L.) Plants under salinity stress. AJCS, Australian Journal of Crop Sceience, 7 (8),1181-1188. Liu, H., Tang, X., Zhang, N., Li, S., & Si, H. 2023a. Role of bzip Transcription Factors in Plant Salt Stress. Int. J. Mol. Sci., 24, 7893. Https://doi.org/10.3390/ijms24097893. Liu, W., Wang, M., Zhong, M., Luo, C., Shi, S., Qian, Y., Kang, Y., & Jiang, B. 2023b. Genome-wide identification of bzip gene family and expression analysis of bhbzip58 under heat stress in wax gourd. BMC Plant Biology, 23, 598. Https://doi.org/10.1186/s12870-023-04580-6. Livak, K. J., & Schmittgen, T. D. 2001. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2− ΔΔCT method. Methods, 25 (4), 402-408. Https://doi.org/10.1006/meth.2001.1262 López-González, C., Juárez-Colunga, S., Trachsel, S., Marsch-Martínez, N., Gillmor, C.S., & Tiessen, A. 2022. Analysis of Global Gene Expression in Maize (Zea mays) Vegetative and Reproductive Tissues That Differ in Accumulation of Starch and Sucrose. Plants, 11, 238. Https://doi.org/10.3390/plants11030238. Ma, H., Liu, C., Li, Z., Ran, Q., Xie, G., Wang, B., Fang, S., Chu, J., and Zhang, J. 2018. Zmbzip4 Contributes to Stress Resistance in Maize by Regulating ABA Synthesis and Root Development. Plant Physiology, 178 (2), 753–770. Https://doi.org/10.1104/pp.18.00436. Mansour, M. M. F., Salama, K.H.A., Ali, F.Z.M., & Abou Hadid, A.F. 2005. Cell and plant responses to nacl in Zea mays cultivars differing in salt tolerance. General and Applied Plant Physiology, 31, 29–41. Macadam, J. W., Sharp R. E., & Nelson, C. J. 1992. Peroxidase Activity in the Leaf Elongation Zone of Tall Fescue. Plant Physiol., 99, 879-885. Doi: 10.1104/pp.99.3.872 Moharramnejad, S., & Valizadeh, M. 2019. A key response of grain yield and superoxide dismutase in maize (Zea mays L.) To water deficit stress. Journal of Plant Physiology and Breeding, 9(2), 77-84. Doi: 10.22034/jppb.2019.10606 Molazem, D., & Bashirzadeh, A. 2015. Impact of Salinity Stress on Proline Reaction, Peroxide Activity, and Antioxidant Enzymes in Maize (Zea mays L.). Pol. J. Environ. Stud., 24(2), 597-603. Doi: https://doi.org/10.15244/pjoes/29691 Moradbeygi, H., Jamei, R., Heidari, R., & Darvishzadeh, R. 2020. Investigating the enzymatic and non-enzymatic antioxidant defense by applying iron oxide nanoparticles in Dracocephalum moldavica L. plant under salinity stress. Scientia Horticulturae, 272, 109537. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2020.109537. Nakano, Y., & Asada, K. 1987. Purification of Ascorbate Peroxidase in Spinach Chloroplasts; Its Inactivation in Ascorbate-Depleted Medium and Reactivation by Monodehydroascorbate Radical. Plant Cell Physiol, 28 (1), 131-140. Doi.org/10.1093/oxfordjournals.pcp.a077268 Nazarli, H., & Faraji, F. 2011. Response of proline, soluble sugars and antioxidant enzymes in Wheat (Trittcum Aestivum L.) To different irrigation regimes in greenhouse condition. Cercetari Agronomice in Moldova., XLIV, 4 (148). DOI: 10.2478/v10298-012-0046-1 Odjegba, V. J., & Chukwunwike, I. C. 2012. Physiological responses of Amaranthus hybridus L. under salinity stress. Indian J. Innov. Dev., 1, 742–748. DOI: 10.52417/njls.v5i2.258 Ouertani, R. N., Abid, G., Karmous, C., Chikha, M. B., Boudaya O., Mahmoudi H., Mejri S., Jansen R.K., & Ghorbel A. 2021. Evaluating the contribution of osmotic and oxidative stress components on barley growth under salt stress. Aob PLANTS, 13 (4). Doi: 10.1093/aobpla/plab034. Omrani, B., & Moharramnejad S. 2018. Study of Salinity Tolerance in Four Maize (Zea Mays L.) Hybrids at Seedling Stage. Journal of Crop Breeding 9 (24). DOI: 10.29252/jcb.9.24.79 Paquin, R., & Lechasseur, P. 1979. Observations sur une méthode de dosage de la praline libre dans les extraide plantes, Can J Bot., 57, 1851-1854. DOI: 10.1139/b79-233 Perveen, S., & Mariyam, N. 2018. Proline treatment induces salt stress tolerance in Maize (Zea Mays L. CV. Safaid Afgoi). Pakistan Journal of Botany, 50 (4), 1265-1271. Popham, P.L., & Novacky, A. 1990. Use of dimethylsulfoxide to detect hydroxyl radical during bacteria-induced hypersensitive reaction. Plant Physiology, 96, 1157-1160. Doi: 10.1104/pp.96.4.1157 Reddy, p. S., jogeswar, g., rasineni, g. K., maheswari, m., reddy, a. R., varshney, r. K., & kishor, p.b. k. 2015. Proline over-accumulation alleviates salt stress and protects photosynthetic and antioxidant enzyme activities in transgenic sorghum [Sorghum bicolor (L.) Moench]. Plant Physiology and Biochemistry, 94: 104e113. Doi: 10.1016/j.plaphy.2015.05.014. Rout, N. P., & Shaw, B. P. 2001. Salt tolerance in aquatic macrophytes: possible involvement of the antioxidative enzymes. Plant Science, 160 (3), 415-423. Https://doi.org/10.1016/S0168-9452(00)00406-4. Sarker, U., & Oba, S. 2020. The response of salinity stress-induced A. Tricolor to growth, anatomy, physiology, non-enzymatic and enzymatic antioxidants. Front. Plant Sci., 11, 559876. Doi: 10.3389/fpls.2020.559876 Shinozaki, K., & Yamaguchi-Shinozaki, K. 2022. Functional genomics in plant abiotic stress responses and tolerance: From gene discovery to complex regulatory networks and their application in breeding. Proceedings of the Japan Academy, Series B Physical and Biological Sciences (Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci.), 98(8), 470–492. Doi: 10.2183/pjab.98.024. Sobahan, M. A., Akter, N., Ohno, M., Okuma, E., Hirai, Y., Mori, I.C., Nakamura, Y., & Murata, Y. 2012. Effects of exogenous proline and glycinebetaine on the salt tolerance of rice cultivars. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 76, 1568–1570. Doi: 10.1271/bbb.120233. Strader, L., Weijers, D., & Wagner, D. 2022. Plant transcription factors-being in the right place with the right company. Curr. Opin. Plant Biol., 65, 102136. Doi: 10.1016/j.pbi.2021.102136. Sudhakar, C., Lakshmi, A., & Giridarakumar, S. 2001. Changes in the antioxidant enzyme efficacy in two high yielding genotypes of mulberry (Morus alba L.) Under nacl salinity. Plant Science, 161, 613-619. Https://doi.org/10.1016/S0168-9452(01)00450-2 Sun, X.L., Li, Y., Cai, H., Bai, X., Ji, W., Ding, X.D., & Zhu, Y.M. 2012. The Arabidopsis atbzip1 transcription factor is a positive regulator of plant tolerance to salt, osmotic and drought stresses. J Plant. Res., 125, 429- 438. Https://doi.org/10.1007/s10265-011-0448-4 Szőllősi, R. 2014. Superoxide Dismutase (SOD) and Abiotic Stress Tolerance in Plants: An Overview. Oxidative Damage to Plants, Antioxidant Networks and Signaling, 89-129. Https://doi.org/10.1016/B978-0-12-799963-0.00003-4 Vighi, I.L., Benitez, L.C., Amaral, M.N., Moraees, G.P., Auler, P.A., Rodrigues, G.S., Deuner, S., Maia, L.C., & Braga, E.J.B. 2017. Functional characterization of the antioxidant enzymes in rice plants exposed to salinity stress. Biology Plant, 61(3), 540-550. Doi: 10.1007/s10535-017-0727-6.
Yilmaz, S., Temizgül, R., Yürürdurmaz, C., & Kaplan, M. 2020. Oxidant and antioxidant enzyme response of redbine sweet sorghum under nacl salinity stress. Bioagro, 32(1), 31-38. Xie, X., He, Z., Chen, N., Tang, Z., Wang, Q., & Cai, Y. 2019. The Roles of environmental factors in regulation of oxidative stress in plant. Biomed Research International, 1–11. Doi: 10.1155/2019/9732325. Yaish, M.W. 2015. Proline accumulation is a general response to abiotic stress in the date palm tree (Phoenix dactylifera L.). Genetics and Molecular Research, 14, 9943–9950. Doi: 10.4238/2015.August.19.30. Yilmaz, A., Nishiyama, M.Y., Fuentes, B.G., Souza, G.M., Janies, D., Gray, J., & Grotewold, E. 2009. GRASSIUS: A platform for comparative regulatory genomics across the grasses. Plant Physiol., 149, 171–180. Doi: 10.1104/pp.108.128579. Zargar Yaghoubi, F., Sarai Tabrizi, M., Mohammadi Torkashvand, A., Esfandiari, M., & Ramezani Etedali, H. 2023. Evaluating the Effect of Combined Water and Salinity Stresses in Estimating the Fodder Maize Biological Yield through Periodic Evaporation and Transpiration. Journal of Water and Soil, 36(6), 677-693. DOI: 10.22067/jsw.2022.77735.1183. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 27 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 21 |
||