| تعداد نشریات | 21 |
| تعداد شمارهها | 472 |
| تعداد مقالات | 3,712 |
| تعداد مشاهده مقاله | 5,468,615 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 3,268,201 |
فراتحلیل QTLهای مرتبط با فتوسنتز، شناسایی ژنهای کاندیدا و مسیرهای عملکردی در برنج | ||
| بیوتکنولوژی و بیوشیمی غلات | ||
| مقاله 5، دوره 5، شماره 1، فروردین 1405، صفحه 87-118 اصل مقاله (1.77 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22126/cbb.2026.13994.1148 | ||
| نویسندگان | ||
| شایان کاظمی لیف شاگرد1؛ عاطفه صبوری* 1؛ زهرا پزشکیان2؛ مهدی سوهانی3 | ||
| 1گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده علوم کشاورزی دانشگاه گیلان. رشت، ایران. | ||
| 2پژوهشکده آبزی پروری آبهای داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران. | ||
| 3گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکده علوم کشاورزی دانشگاه گیلان. رشت، ایران. | ||
| چکیده | ||
| مقدمه: توسعهی راهکارهای بهبود صفات عملکردی در محصولات استراتژیک مانند برنج، نیازمند شناسایی دقیق جایگاههای ژنتیکی مرتبط است. اگرچه پژوهشهای متعددی در زمینه QTLهای فتوسنتزی برنج انجام شده، اما به دلیل تفاوت در شرایط آزمایشگاهی و والدین، یکپارچهسازی نتایج جهت بهرهبرداری کاربردی همچنان یک چالش است. فراتحلیل دادههای موجود و دستیابی به جایگاههای مشترک روی ژنوم یا متاQTL (Meta-QTL: MQTL)، راهکاری کارآمد برای عبور از محدودیتهای مطالعات انفرادی و شناسایی نواحی ژنتیکی با ثبات بالا محسوب میشود. مواد و روشها: در این تحقیق، ابتدا مطالعات مربوط به QTLهای مرتبط با صفات فتوسنتزی در برنج گردآوری و بررسی شدند. از میان ۲۷ مطالعه شناساییشده، در نهایت ۱۷ مطالعه شامل ۱۲۹ QTL واجد شرایط برای انجام فراتحلیل انتخاب شد. سپس نقشه توافقی تهیه و بر اساس دستورالعمل نرمافزار BioMercator، نواحی MQTL بر حسب سانتیمورگان تعیین شدند. در ادامه، ژنها و نشانگرهای مجاور نواحی متاQTL شناسایی شدند و در نهایت، مسیرهای عملکردی ژنهای کاندید با استفاده از پایگاههای داده و ابزارهای بیوانفورماتیکی مرتبط مورد بررسی قرار گرفتند. یافتهها: براساس نتایج در کل ۳۲ متاQTL شناسایی شدند؛ کروموزومهای ۱ و ۳ با پنج ناحیهی متا بیشترین و کروموزوم ۹ با دو ناحیهی متا کمترین تعداد متاQTL را داشتند. همچنین در کروموزومهای ۷، ۸، ۱۰ و ۱۱ هیچ ناحیهی متایی شناسایی نشد. با استفاده از ابزارهای آنلاین، ژنهای موجود در این نواحی متاQTL مورد شناسایی قرار گرفته و بهعنوان ژنهای کاندید معرفی شدند. در مجموع ۱۳۱ شناسهی ژنی در ۲۹ متاQTL یافت شد؛ بیشترین تعداد ژنها مربوط به MQTL6.3 با ۵۹ شناسه بود. در مقابل، متاQTL های 1.2، 3.2 و 4.3 هرکدام تنها یک شناسهی ژنی داشتند و در MQTL12.3 و MQTL3.1 هیچ ژنی شناسایی نشد. از جملهی ژنهای مهم شناساییشده میتوان به OsCML19، OsSTA36، OsRDCP4، OsPP2C60، OsSEQ18، OsZIP54 و OsUCL18 اشاره کرد. تحلیل هستیشناسی و مسیرهای عملکردی این ژنها نشان داد که تنشهایی مانند سرما، گرما و شوری، باعث تغییراتی در فتوسنتز و میزان کلروفیل میشود که در این وضعیت مسیرهای زیستی نظیر تاخوردگی پروتئینها، متابولیسم ترکیبات دیواره سلولی، پاسخ به هیدروژن پراکسید و رشد ریشه بهطور چشمگیری فعال میشوند. همچنین فعالیتهای مولکولی همچون اتصال عوامل رونویسی، عملکرد نیترات ردوکتاز و ترکیب یون مولیبدن با کوفاکتور آن، تغییر بیان معناداری نشان میدهند. نتیجهگیری: اگرچه مکانیابی QTL در مطالعات موردی با چالشهایی همچون اثرات محیطی، تفاوت والدین، زمینه ژنتیکی و نقشه کروموزومی مواجه است، فراتحلیل QTL در تحقیق حاضر با ترسیم نقشه جامع کروموزومی، امکان بررسی همزمان مجموعه QTLهای جمعآوری شده را فراهم آورد و متاQTLهای معنیدار شناسایی شد. بررسی نواحی ژنومی این متاQTLها منجر به ردیابی ژنهای کلیدی دخیل در پاسخ به تنش، مسیرهای فعالشده در شرایط تنش و محصولات پروتئینی حاصل از آنها انجامید و در نهایت مسیرهای مهم بیولوژیکی و عملکردی در سطح سلولی و مولکولی شناسایی شدند. این یافتهها میتوانند درک سازوکارهای مولکولی فتوسنتز را بهبود بخشیده و زمینهساز بهنژادی مؤثر گیاهان باشند. با این حال، نتایج فراتحلیل به کیفیت و تنوع مطالعات اولیه (نوع جمعیت، تراکم نشانگر، روش آماری، محیط و مرحله رشد) وابسته است. در این پژوهش، بهدلیل تعداد محدود مطالعات مرتبط با صفات فتوسنتزی، همه دادهها بدون در نظر گرفتن تنوع محیطی و رشدی وارد شدند؛ بنابراین متاQTLها و ژنهای کاندید معرفیشده نیازمند اعتبارسنجی در جمعیتها و محیطهای مستقل، از طریق نقشهیابی دقیق، تحلیل بیان و روشهای مولکولی هستند. | ||
| کلیدواژهها | ||
| مکانیابی QTL؛ متاQTL؛ محتوای کلروفیل؛ هستی شناسی ژن | ||
| مراجع | ||
|
Abdelkhalik, A. F., Shishido, R., Nomura, K., & Ikehashi, H. 2005. QTL-based analysis of leaf senescence in an indica/japonica hybrid in rice (Oryza sativa L.). Theoretical and Applied Genetics, 110, 1226-1235. https://doi.org/10.1007/s00122-005-1955-2 Adachi, S., Yamamoto, T., Nakae, T., Yamashita, M., Uchida, M., Karimata, R., Ichihara, N., Soda, K., Ochiai, T., Ao, R., Otsuka, C., Nakano, R., Takai, T., Ikka, T., Kondo, K., Ueda, T., Ookawa, T., & Hirasawa, T. 2019. Genetic architecture of leaf photosynthesis in rice revealed by different types of reciprocal mapping populations. Journal of Experimental Botany, 70(19), 5131-5144. https://doi.org/10.1093/jxb/erz303 Asif, S., Kim, E.G., Jang, Y.H., Jan, R., Kim, N., Asaf, S., Lubna., Farooq, M., & Kim, K.M. 2022. Identification of the OsCML4 gene in rice related to salt stress using QTL analysis. Plants, 11(19), 2467. https://doi.org/10.3390/plants11192467 Anilkumar, C., Sah, R. P., Muhammed Azharudheen, T. P., Behera, S., Singh, N., Prakash, N. R., Sunitha, N. C., Devanna, B. N., Marndi, B. C., Patra, B. C., & Nair, S. K. 2022. Understanding complex genetic architecture of rice grain weight through QTL-meta analysis and candidate gene identification. Scientific Reports, 12(1), 13832. https://doi.org/10.1038/s41598-022-17402-w Bae, H., Kim, S. K., Cho, S. K., Kang, B. G., & Kim, W. T. 2011. Overexpression of OsRDCP1, a rice RING domain-containing E3 ubiquitin ligase, increased tolerance to drought stress in rice (Oryza sativa L.). Plant Science, 180(6), 775-782. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2011.02.008 Barik, S. R., Pandit, E., Mohanty, S. P. Deepak Kumar, N. & Sharat Kumar, P. 2020. Genetic mapping of physiological traits associated with terminal stage drought tolerance in rice. BMC Genetics, 21, 76. https://doi.org/10.1186/s12863-020-00883-x Barik, J., Kumar, V., Lenka, S. K., & Panda, D. 2019. Genetic potentiality of lowland indigenous indica rice (Oryza sativa L.) landraces to anaerobic germination potential. Plant Physiology Reports, 24, 249-261. https://doi.org/10.1007/s40502-019-00441-3 Bing, Y. U. E., Wei-Ya, X. U. E., Li-Jun, L. U. O., & Yong-Zhong, X. I. N. G. 2006. QTL analysis for flag leaf characteristics and their relationships with yield and yield traits in rice. Acta Genetica Sinica, 33(9), 824-832. https://doi.org/10.1016/s0379-4172(06)60116-9 Boonburapong, B., & Buaboocha, T. 2007. Genome-wide identification and analyses of the rice calmodulin and related potential calcium sensor proteins. BMC Plant Biology, 7, 4. https://doi.org/10.1186/1471-2229-7-4 Buchner, P., Takahashi, H., & Hawkesford, M. J. 2004. Plant sulphate transporters: co-ordination of uptake, intracellular and long-distance transport. Journal of Experimental Botany, 55(404), 1765-1773. https://doi.org/10.1093/jxb/erh206 Chen, X., Mei, Q., Liang, W., Sun, J., Wang, X., Zhou, J., Wang, J., Zhou, Y., Zheng, B., Yang, Y., & Chen, J. 2020. Gene mapping, genome-wide transcriptome analysis, and WGCNA reveals the molecular mechanism for triggering programmed cell death in rice mutant pir1. Plants, 9(11), 1607. https://doi.org/10.3390/plants9111607 Chinpongpanich, A., Limruengroj, K., Phean-O-Pas, S., Limpaseni, T., & Buaboocha, T. 2012. Expression analysis of calmodulin and calmodulin-like genes from rice, Oryza sativa L. BMC Research Notes, 5, 1-12. https://doi.org/10.1186/1756-0500-5-625 Dai, G. J., Cheng, S. H., Hua, Z. T., Zhang, M. L., Jiang, H. B., Feng, Y., Shen, X. H., Su, Y. A., He, N., Ma, Z. B., Ma, X. Q., Hou, S. G., & Wang, Y. R. 2015. Mapping quantitative trait loci for nitrogen uptake and utilization efficiency in rice (Oryza sativa L.) at different nitrogen fertilizer levels. Genetics and Molecular Research, 14, 10404-10414. https://doi.org/10.4238/2015.september.8.1 Darvasi, A. & Soller, M. 1997. A Simple Method to Calculate Resolving Power and Confidence Interval of QTL Map Location. Behavior Genetics, 27, 125–132. https://doi.org/10.1023/A:1025685324830 De Leon, T.B., Linscombe, S. & Subudhi, P.K. 2016. Molecular Dissection of Seedling Salinity Tolerance in Rice (Oryza sativa L.) Using a High-Density GBS-Based SNP Linkage Map. Rice, 9, 52. https://doi.org/10.1186/s12284-016-0125-2 Dong, Y.J., 2007. Quantitative trait loci for leaf chlorophyll content at two developmental stages of rice (Oryza sativa L.), Communications in Biometry and Crop Science, 2, 1-7. Dwiningsih, Y., Kumar, A., Thomas, J., Ruiz, C., Alkahtani, J., Baisakh, N., & Pereira, A. 2021. Quantitative trait loci and candidate gene identification for chlorophyll content in RIL rice population under drought conditions. Indonesian Journal of Natural Pigments, 3(2), 54-54. https://doi.org/10.33479/ijnp.2021.03.2.54 Feizi, N., Sabouri, A., Abedi, A., & Bakhshipour, A. 2025. Meta-analysis of quantitative trait loci associated with grain quality traits in rice (Oryza sativa L.). Acta Physiologiae Plantarum, 47, 29 https://doi.org/10.1007/s11738-025-03780-x Fu, J.D., Yan, Y.F., Kim, M.Y., Lee, S.H. & Lee, B.W. 2011. Population-specific quantitative trait loci mapping for functional stay-green trait in rice (Oryza sativa L.). Genome, 54(3): 235-243. https://doi.org/10.1139/g10-113 Gu, J., Yin, X., Zhang, C., Wang, H., & Struik, P. C. 2014. Linking ecophysiological modelling with quantitative genetics to support marker-assisted crop design for improved yields of rice (Oryza sativa) under drought stress. Annals of Botany, 114(3), 499-511. https://doi.org/10.1093/aob/mcu127 Guan, J.C., Jinn, T.L., Yeh, C.H., Feng, S.P., Chen, Y.M., & Lin, C.Y. 2004. Characterization of the genomic structures and selective expression profiles of nine class I small heat shock protein genes clustered on two chromosomes in rice (Oryza sativa L.). Plant Molecular Biology, 56, 795-809. https://doi.org/10.1007/s11103-004-5182-z Gimhani, D.R., Gregorio, G.B., Kottearachchi, N.S., & Samarasinghe, W.L. 2016. SNP-based discovery of salinity-tolerant QTLs in a biparental population of rice (Oryza sativa). Molecular Genetics and Genomics, 291:2081–2099. https://doi.org/10.1007/s00438- 016- 1241-9 Hu, S. P., Zhou, Y., Zhang, L., Zhu, X. D., Li, L., Luo, L. J., Liu, G. L., & Zhou, Q. M. 2009. Correlation and quantitative trait loci analyses of total chlorophyll content and photosynthetic rate of rice (Oryza sativa) under water stress and well‐watered conditions. Journal of Integrative Plant Biology, 51(9), 879-888. https://doi.org/10.1111/j.1744-7909.2009.00846.x Huang, L., Dai, L., Wang, L., Leng, Y., Yang, Y., Xu, J., Hu, J., Rao, Y., Zhang, G., Zhu, L., Dong, G., Guo, L., Qian, Q., & Zeng, D. 2015. Genetic dissection for chlorophyll content of the top three leaves during grain filling in rice (Oryza sativa L.). Journal of Plant Growth Regulation, 34, 381-391. https://doi.org/10.1007/s00344-014-9474-5 Islam, M. S., Ontoy, J., & Subudhi, P. K. 2019. Meta-analysis of quantitative trait loci associated with seedling-stage salt tolerance in rice (Oryza sativa L.). Plants, 8(2), 33. https://doi.org/10.3390/plants8020033 Jang, Y. H., Park, J. R., Kim, E. G., & Kim, K. M. 2022. OsbHLHq11, the basic helix-loop-helix transcription factor, involved in regulation of chlorophyll content in rice. Biology, 11(7), 1000. https://doi.org/10.3390/biology11071000 Jiang, S. K., Zhang, X. J., Zheng-Jin, X. U., & Wen-Fu, C. H. E. N. 2010. Comparison between QTLs for chlorophyll content and genes controlling chlorophyll biosynthesis and degradation in japonica rice. Acta Agronomica Sinica, 36(3), 376-384. https://doi.org/10.1016/s1875-2780(09)60036-5 Jiang, S., Zhang, X., Zhang, F., Xu, Z., Chen, W., & Li, Y. 2012. Identification and fine mapping of qCTH4, a quantitative trait loci controlling the chlorophyll content from tillering to heading in rice (Oryza sativa L.). Journal of Heredity, 103(5), 720-726. https://doi.org/10.1093/jhered/ess041 Kaur, S., Das, A., Sheoran, S., & Rakshit, S. 2023. QTL Meta-Analysis: An Approach to Detect Robust and Precise QTL. Tropical Plant Biology, 16(4), 225-243. https://doi.org/10.1007/s12042-023-09335-z Kumar, S., Asif, M. H., Chakrabarty, D., Tripathi, R. D., & Trivedi, P. K. 2011. Differential expression and alternative splicing of rice sulphate transporter family members regulate sulphur status during plant growth, development and stress conditions. Functional & Integrative Genomics, 11, 259-273. https://doi.org/10.1007/s10142-010-0207-y Lin, D., Zhang, J., Zuo. H., Xu, J. Luo, L. & Dong, Y. 2010. Mapping quantitative trait loci associated with leaf senescence during maturation of rice (Oryza sativa L.). Asian Journal of Plant Sciences. 9(1), 51-57. Lim, J. H., & Paek, N. C. 2015. Quantitative trait locus mapping and candidate gene analysis for functional stay-green trait in rice. Plant Breeding and Biotechnology, 3(2), 95-107. https://doi.org/10.9787/PBB.2015.3.2.095 Ling, S., Chen, C., Wang, Y., Sun, X., Lu, Z., Ouyang, Y., & Yao, J. 2015. The mature anther-preferentially expressed genes are associated with pollen fertility, pollen germination and anther dehiscence in rice. BMC Genomics, 16, 1-17. https://doi.org/ 10.1186/s12864-015-1305-y Ma, H., Zhao, H., Liu, Z., & Zhao, J. 2011. The phytocyanin gene family in rice (Oryza sativa L.): genome-wide identification, classification and transcriptional analysis. PLOS One, 6(10), e25184. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0025184 McCouch, S.R., Teytelman, L., Xu, Y., Lobos, K.B., Clare, K., Walton, M., Fu, B., Maghirang, R., Li, Z., Xing, Y., Zhang, Q., Kono, I., Yano, M., Fjellstrom, R., DeClerck, G., Schneider, D., Cartinhour, S., Ware, D. & Stein, L. 2002. Development and mapping of 2240 new SSR Markers for rice (Oryza sativa L.). DNA Research. 9(6), 199-207. https://doi.org/10.1093/dnares/9.6.199 Okada, S., & Yamasaki, M. 2019. Validation of a quantitative trait locus for the white-core expression rate of grain on chromosome 6 in a brewing rice cultivar and development of DNA markers for marker-assisted selection. Breeding Science, 69(3), 401-409. https://doi.org/10.1270/jsbbs.18166 Panesar, P. S., & Kaur, S. 2016. Rice: types and composition. In: Caballero B, Finglas PM, Toldrá F, editors. Encyclopedia of Food and Health. Oxford: Academic Press, 646-652. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384947-2.00596-1 Rabiei, B. & Sabouri, H. 2008. Mapping Genes Controlling Quantitative Traits. Guilan, University of Guilan Press. 193 pages. [In Persian] Sabouri, A., Toorchi, M., Rabiei, B., Aharizad, S., Moumeni, A., & Singh, R. 2010. Identification and mapping of QTLs for agronomic traits in indica-indica cross of rice (Oryza sativa L.). Cereal Research Communications, 38(3), 317-326. https://doi.org/10.1556/CRC.38.2010.3.2 Saito, R., Smoot, M. E., Ono, K., Ruscheinski, J., Wang, P. L., Lotia, S., Pico, A. R., Bader, G. D., & Ideker, T. 2012. A travel guide to Cytoscape plugins. Nature Methods, 9(11), 1069-1076. https://doi.org/10.1038/nmeth.2212 Selamat, N., & Nadarajah, K. K. 2021. Meta-analysis of quantitative traits loci (QTL) identified in drought response in rice (Oryza sativa L.). Plants, 10(4), 716. https://doi.org/10.3390/plants10040716 Shafique, M. S., Yapei, L., Man, L., Hongjie, W., Ruyi, S., Chunlian, W., & Zhiyuan, J. 2024. Coevolution unveiled: Sulfate transporters mediate rice resistance and susceptibility to Xanthomonas oryzae pv. oryzicola. Plant Biotechnology Journal, 22(9), 2632-2634. https://doi.org/10.1111/pbi.14377 Singh, A., Kanwar, P., Pandey, A., Tyagi, A. K., Sopory, S. K., Kapoor, S., & Pandey, G. K. 2013. Comprehensive genomic analysis and expression profiling of phospholipase C gene family during abiotic stresses and development in rice. PLOS One, 8(4), e62494. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0062494 Sun, J., Xie, D., Zhang, E., Zheng, H., Wang, J., Liu, H., Yang, L., Zhang, S., Wang, L., & Zou, D. 2019. QTL mapping of photosynthetic-related traits in rice under salt and alkali stresses. Euphytica, 215, 1-14. https://doi.org/10.1007/s10681-019-2470-x Takai, T., Kondo, M., Yano, M., & Yamamoto, T. 2010. A quantitative trait locus for chlorophyll content and its association with leaf photosynthesis in rice. Rice, 3, 172-180. https://doi.org/10.1007/s12284-010-9047-6 Takai, T., Arai‐Sanoh, Y., Iwasawa, N., Hayashi, T., Yoshinaga, S., & Kondo, M. 2012. Comparative Mapping Suggests Repeated Selection of the Same Quantitative Trait Locus for High Leaf Photosynthesis Rate in Rice High‐Yield Breeding Programs. Crop Science, 52(6), 2649-2658. https://doi.org/10.2135/cropsci2012.03.0179 Teng, S., Qian, Q., Zeng, D., Kunihiro, Y., Fujimoto, K., Huang, D., & Zhu, L. 2004. QTL analysis of leaf photosynthetic rate and related physiological traits in rice (Oryza sativa L.). Euphytica, 135(1), 1-7. https://doi.org/10.1023/b:euph.0000009487.89270.e9 Ujiie, K., Kashiwagi, T., & Ishimaru, K. 2012. Identification and functional analysis of alleles for productivity in two sets of chromosome segment substitution lines of rice. Euphytica, 187, 325-337. https://doi.org/10.1007/s10681-012-0660-x. Veisi, Sh., Sabouri, A., & Abedi, A. 2022. Meta-analysis of QTLs and candidate genes associated with seed germination in rice (Oryza sativa L.). Physiology and Molecular Biology of Plants. 28(8): 1587-1605. https://doi.org/10.1007/s12298-022-01232-1 Vishnukiran, T., Neeraja, C. N., Jaldhani, V., Vijayalakshmi, P., Raghuveer Rao, P., Subrahmanyam, D., & Voleti, S. R. 2020. A major pleiotropic QTL identified for yield components and nitrogen content in rice (Oryza sativa L.) under differential nitrogen field conditions. PLOS One, 15(10), e0240854. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0240854 Xing, Y., Tan, Y., Hua, J. P., Sun, X., Xu, C., & Zhang, Q. 2002. Characterization of the main effects, epistatic effects and their environmental interactions of QTLs on the genetic basis of yield traits in rice. Theoretical and Applied Genetics, 105(2), 248-257. https://doi.org/10.1007/s00122-002-0952-y Xue, H., Gao, X., He, P., & Xiao, G. 2022. Origin, evolution, and molecular function of DELLA proteins in plants. The Crop Journal, 10(2), 287-299. https://doi.org/10.1016/j.cj.2021.06.005 Xue, T., Wang, D., Zhang, S., Ehlting, J., Ni, F., Jakab, S., Zheng, C., & Zhong, Y. 2008. Genome-wide and expression analysis of protein phosphatase 2C in rice and Arabidopsis. BMC Genomics, 9, 1-21. https://doi.org/10.1186/1471-2164-9-550 Yamamoto, T., Suzuki, T., Suzuki, K., Adachi, S., Sun, J., Yano, M., Ookawa, T. & Hirasawa, T. 2017. Characterization of a genomic region that maintains chlorophyll and nitrogen contents during ripening in a high-yielding stay-green rice cultivar. Field Crops Research, 206: 54-64. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2017.03.001 Yang, D., Liu, X., Yin, X., Dong, T., Yu, M., & Wu, Y. 2021. Rice non-specific phospholipase C6 is involved in mesocotyl elongation. Plant and Cell Physiology, 62(6), 985-1000. https://doi.org/10.1093/pcp/pcab069 Yang, G., Tu, S., Li, S., Feng, L., Kong, J., Li, H., & Li, Y. 2008. Analysis of quantitative trait loci underlying the traits related to chlorophyll content of the flag leaf in rice. Frontiers of Biology in China, 3(4), 443-448. https://doi.org/10.1007/s11515-008-0093-z Yang, L., Wang, J., Han, Z., Lei, L., Liu, H. L., Zheng, H., Xin, W., & Zou, D. 2021. Combining QTL-seq and linkage mapping to fine map a candidate gene in qCTS6 for cold tolerance at the seedling stage in rice. BMC Plant Biology, 21(1), 278. https://doi.org/10.1186/s12870-021-03076-5. Ye, W., Hu, S., Wu, L., Ge, C., Cui, Y., Chen, P., Xu, J., Dong, G., Guo, L., & Qian, Q. 2017. Fine mapping a major QTL qFCC7 L for chlorophyll content in rice (Oryza sativa L.) cv. PA64s. Plant Growth Regulation, 81, 81-90. https://doi.org/10.1007/s10725-016-0188-5. Yoo, S. C., Cho, S. H., Zhang, H., Paik, H. C., Lee, C. H., Li, J., Yoo, J. H., Lee, B. W., Koh, H. J., Seo, H. S., & Paek, N. C. 2007. Quantitative trait loci associated with functional stay-green SNU-SG1 in rice. Molecules & Cells (Springer Science & Business Media BV), 24(1), 83-94. https://doi.org/10.1016/s1016-8478(23)10759-x Zhang, G. H., Li, S. Y., Wang, L., Ye, W. J., Zeng, D. L., Rao, Y. C., Peng, Y. L., Hu, J., Yang, Y. L., Xu, J., Ren, D. Y., Gao, Z. Y., Zhu, L., Dong, G. J., Hu, X. M., Yan, M. X., Guo, L. B., Li, C. Y., & Qian, Q. 2014. LSCHL4 from japonica cultivar, which is allelic to NAL1, increases yield of indica super rice 93-11. Molecular Plant, 7(8): 1350-1364. https://doi.org/10.1093/mp/ssu055. Zhang, J., Luo, T., Wang, W., Cao, T., Li, R., & Lou, Y. 2017. Silencing OsSLR1 enhances the resistance of rice to the brown planthopper Nilaparvata lugens. Plant, Cell & Environment, 40(10), 2147-2159. https://doi.org/10.1111/pce.13012. Zhang, J. P., Yu, Y., Feng, Y. Z., Zhou, Y. F., Zhang, F., Yang, Y. W., Lei, M. Q., Zhang, Y. C., & Chen, Y. Q. 2017. MiR408 regulates grain yield and photosynthesis via a phytocyanin protein. Plant Physiology, 175(3), 1175-1185. https://doi.org/10.1104/pp.17.01169. Zhao, X. Q., Xu, J. L., Zhao, M., Lafitte, R., Zhu, L. H., Fu, B. Y., Gao, Y. M., & Li, Z. K. 2008. QTLs affecting morph-physiological traits related to drought tolerance detected in overlapping introgression lines of rice (Oryza sativa L.). Plant Science, 174(6), 618-625. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2008.03.009 | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 77 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 29 |
||